Открыть сервисСервис

ИГХ в онкологии

Иммуногистохимия (ИГХ) — лабораторный метод исследования тканей, основанный на специфическом взаимодействии антител с антигенами (белками) клеток. В онкологии ИГХ применяется для верификации опухолей, определения их гистологического типа, оценки прогноза и подбора таргетной терапии. Метод позволяет выявить наличие и распределение определённых белков в срезах ткани, что критически важно там, где морфологическое исследование под микроскопом даёт неоднозначный результат.

Принцип метода

ИГХ основана на реакции антиген — антитело. На тонком срезе ткани (толщиной 3–5 мкм) последовательно наносятся:

  1. Первичные антитела, специфичные к определённому антигену (белку). Могут быть моноклональными (реагируют с одним эпитопом) или поликлональными (распознают несколько эпитопов).
  2. Вторичные антитела, связывающиеся с первичными и помеченные ферментом — чаще щелочной фосфатазой (ALP) или пероксидазой (HRP).
  3. Система визуализации — хромоген, который при взаимодействии с ферментом образует окрашивание (обычно коричневое или красное) в месте локализации антигена.

В результате под микроскопом исследователь видит, какие клетки несут целевой белок и как он распределён в ткани. Существует также неферментная разновидность — иммунофлуоресценция, когда визуализация идёт за счёт флуорохромов, но в рутинной онкологической диагностике чаще используется именно ферментная ИГХ с хромогеном.

Подготовка материала

Золотым стандартом подготовки материала остаётся формалин-фиксация с последующей заливкой в парафин (ФФБЕ — formalin fixed paraffin embedded). Формалин фиксирует структуру ткани, но частично маскирует антигены, поэтому перед окрашиванием проводят антигенную ремаскировку — нагревание среза в буферном растворе (чаще цитратном или ЭДТА) для восстановления структуры белка.

Важно соблюдать единый стандарт фиксации: передержка в формалине (более 48–72 часов) или наоборот недостаточная фиксация могут приводить к ложноотрицательным результатам.

Что позволяет установить ИГХ в онкологии

Верификация опухоли

Первое и главное применение — подтвердить, что поражение действительно является опухолью и определить её природу. Например, при метастазе неясного первичного очага панель ИГХ-маркеров помогает установить, из какого органа пришла опухоль:

МаркерТипичная локализация опухоли
TTF-1Лёгкие, щитовидная железа
PAX8Почки, яичники, матка
GATA3Молочная железа, мочевой пузырь
CDX2Толстая кишка
HEPAR-1Печень
S100, SOX10Меланома, шваннома

Определение рецепторов

Для рака молочной железы обязательным является определение эстрогеновых рецепторов (ER), прогестероновых рецепторов (PR) и HER2. Результаты напрямую определяют тактику лечения: при ER/PR-позитивной опухоли назначают гормональную терапию, а при HER2-сверхэкспрессии — таргетные препараты (трастузумаб и аналоги).

Оценка пролиферативной активности

Ki-67 — маркер пролиферации, отражающий долю клеток, находящихся в активном клеточном цикле. Высокий индекс Ki-67 (например, более 20–30% при раке молочной железы) обычно указывает на агрессивный рост и неблагоприятный прогноз.

Маркеры апоптоза и аутофагии

В научной онкологии ИГХ применяется для изучения экспрессии белков, связанных с гибелью клеток, в том числе BCL-2 (антиапоптотический белок, часто избыточно экспрессируемый в лимфомах) и p53 (маркер мутаций супрессора опухолевого роста).

Диагностика лимфом

Иммунофенотипирование с помощью ИГХ — основной метод классификации лимфопролиферативных заболеваний. Панели антител к CD-маркерам (CD20, CD3, CD5, CD10, CD30, CD15 и др.) позволяют отличить болезнь Ходжкина от неходжкинских лимфом и уточнить подтип.

Панельное исследование

В онкологической практике редко используется один маркер. Обычно назначают панель из 5–15 антител, результаты интерпретируются в комплексе. Современные лаборатории переходят к автоматизации: роботизированные системы (Ventana, Dako) обеспечивают воспроизводимость окрашивания и стандартизацию протоколов.

Ограничения метода

  • Результат зависит от качества фиксации и хранения блока ткани.
  • Возможны ложноотрицательные и ложноположительные реакции.
  • ИГХ даёт информацию о белке, но не о генетических мутациях — для этого нужны молекулярно-генетические методы (FISH, ПЦР, секвенирование).
  • Интерпретация субъективна и зависит от квалификации патоморфолога, хотя в последние годы внедряются системы автоматизированного подсчёта.

Роль в современной онкологии

ИГХ остаётся обязательным этапом диагностики практически любой солидной опухоли и гематологического заболевания. По данным клинических рекомендаций, без ИГХ-верификации невозможно окончательное заключение по большинству биопсийных и операционных препаратов. Метод также активно используется в клинических исследованиях новых таргетных препаратов, где экспрессия определённого белка служит критерием включения пациента в исследование.

Источники:

  • Клинические рекомендации РОП (Российского онкологического сообщества) по диагностике и лечению злокачественных новообразований
  • ВОЗ. Классификация опухолей мягких тканей и костей (WHO Classification of Tumours)
  • Робинсон Д. Р. и др. Immunohistochemistry in Cancer Diagnosis and Prognosis
  • Ковалёв С. М., Тер-Ованесов М. Д. Патоморфологическая диагностика опухолей человека
Заметили ошибку или не согласны с информацией в статье? Напишите нам support@bfometr.ru